Analisi GC Purge-and-Trap veloce e ottimizzata di composti volatili in campioni di suolo e acqua
Applicazione descritta: analisi ottimizzata dei composti volatili utilizzando una colonna Rtx-VMS e i CRM di Restek, per ottenere in minor tempo dati migliori sui VOC
Analisi GC Purge-and-Trap veloce e ottimizzata di composti volatili in campioni di suolo e acqua
- Riduzione dei tempi di set-up: abbiamo ottimizzato per te l’analisi dei composti volatili!
- L'apposita colonna Rtx-VMS separa i gas a eluizione rapida e i VOC più critici, garantendo un'analisi accurata e affidabile dei composti volatili.
- CRM formulati con precisione consentono una quantificazione accurata e sono garantiti dalla documentazione rigorosa e dall’accreditamento ISO di Restek.
I composti organici volatili (VOC) comportano rischi per la salute umana e possono penetrare nell'ambiente e nei sistemi idrici in svariati modi, come lo smaltimento improprio di prodotti chimici industriali (per es. solventi clorurati) o la fuoriuscita di componenti di carburante da serbatoi di stoccaggio sotterranei. I programmi di monitoraggio utilizzano spesso l’analisi GC Purge-and-Trap di composti volatili in campioni di suolo e acqua per tracciare la contaminazione da composti organici volatili. Le prime colonne di silice fusa impiegate per questa analisi si basavano su fasi stazionarie difenil dimetil polisilossano. Tuttavia, queste colonne rendono in genere complicata la risoluzione dei gas. Per supportare i laboratori che eseguono analisi Purge-and-Trap dei composti volatili, Restek ha progettato appositamente la colonna Rtx-VMS per ottimizzare la separazione dei VOC di rilevanza ambientale comunemente analizzati. La colonna Rtx-VMS è caratterizzata da una fase stazionaria selettiva per i composti organici volatili, un film sufficientemente spesso da trattenere e risolvere i composti volatili a basso punto di ebollizione, nonché una stabilità che permette di eluire i VOC ad alto punto di ebollizione.
La colonna Rtx-VMS è stata ottimizzata per l’analisi dei composti volatili e quindi offre una risoluzione eccellente dei VOC più critici, garantendo una quantificazione più precisa con tempi di analisi rapidi. Come si evince dai cromatogrammi che seguono, è possibile migliorare la qualità dei dati e la produttività del laboratorio utilizzando una colonna Rtx-VMS insieme agli standard di riferimento certificati (CRM) di Restek. Nel primo esempio, si è ottenuta una risoluzione eccellente degli 82 contaminanti dell'acqua potabile elencati nel metodo EPA 524.3, inclusi o-xylene e styrene, che spesso coeluiscono su altre colonne. I laboratori che effettuano l’analisi in acqua potabile dei sette composti volatili elencati nella terza regola di monitoraggio dei contaminanti non regolamentati (Unregulated Contaminant Monitoring Rule 3, UCMR3) trarranno enorme vantaggio dall’applicazione e dai prodotti qui presentati. Avere a disposizione tutti i composti organici volatili in sole tre ampolle e la documentazione CRM semplifica l'attività di calibrazione. Inoltre, grazie alla separazione e rilevazione dei composti volatili con la colonna Rtx-VMS si ottengono i migliori dati qualitativi per l’analisi Purge-and-Trap dei composti volatili nell’acqua potabile.
Il secondo cromatogramma di seguito mostra le prestazioni della colonna Rtx-VMS in termini di separazione di un elenco più vasto di composti volatili, nello specifico i 102 elencati nel metodo EPA 8260. Mentre il metodo EPA 524.3 è stato elaborato per i composti organici spurgabili in campioni di acqua, il metodo EPA 8260 può essere impiegato per l’analisi Purge-and-Trap di composti volatili in una gamma molto più diversificata di campioni (suolo, acqua, rifiuti solidi, ecc.). In questo esempio si ottengono ancora una volta buoni risultati cromatografici per i composti volatili a eluizione sia rapida che tardiva, ma particolarmente degna di rilievo è la separazione dei composti ossigenati. I composti ossigenati vengono aggiunti alle benzine per aumentare le prestazioni del carburante e sono composti target nelle attività di monitoraggio delle perdite dei serbatoi di stoccaggio sotterranei. L’analisi GC-MS Purge-and-Trap con una colonna Rtx-VMS altamente selettiva è raccomandata per questo metodo perché i composti ossigenati chiave, quali methyl tert-butyl ether (MTBE) e tert-butyl alcohol (TBA), coeluiscono su altre colonne GC e condividono anche gli ioni utilizzati per l’identificazione. Oltre a separare questi componenti negli standard di riferimento indicati sotto, la colonna Rtx-VMS è in grado di risolvere MTBE e TBA, come pure altri composti ossigenati, da altri composti target e componenti della matrice potenzialmente interferenti presenti nella benzina. Per osservare la separazione e l’identificazione di 5 ppb di composti ossigenati in un campione di benzina leggi la nostra application note.
Come mostrato nei cromatogrammi, i CRM di Restek abbinati alla colonna Rtx-VMS sono strumenti estremamente efficaci, ottimizzati per l’analisi GC Purge-and-Trap dei composti volatili. L’esclusiva fase della colonna Rtx-VMS offre la migliore separazione disponibile sul mercato per quanto riguarda le coppie di composti critici. Inoltre, gli standard di riferimento certificati di Restek sono completi, prodotti e sottoposti a controllo qualità nei nostri laboratori accreditati ISO e vengono forniti insieme a tutta la documentazione necessaria per semplificarti il lavoro.
Peaks | |
---|---|
1. | Dichlorodifluoromethane |
2. | Chlorodifluoromethane |
3. | Chloromethane |
4. | Vinyl chloride |
5. | 1,3-Butadiene |
6. | Bromomethane |
7. | Trichlorofluoromethane |
8. | Diethyl ether |
9. | 1,1-Dichloroethene |
10. | Carbon disulfide |
11. | Methyl iodide |
12. | Allyl chloride |
13. | Methylene chloride |
14. | trans-1,2-Dichloroethene |
15. | Methyl acetate |
16. | MTBE-D3 (SS) |
17. | MTBE |
18. | tert-Butyl alcohol (TBA) |
19. | Diisopropyl ether (DIPE) |
20. | 1,1-Dichloroethane |
21. | tert-Butyl ethyl ether (ETBE) |
22. | cis-1,2-Dichloroethene |
23. | Bromochloromethane |
24. | Chloroform |
25. | Carbon tetrachloride |
26. | Tetrahydrofuran |
27. | 1,1,1-Trichloroethane |
Peaks | |
---|---|
28. | 1,1-Dichloropropene |
29. | 1-Chlorobutane |
30. | Benzene |
31. | tert-Amyl methyl ether (TAME) |
32. | 1,2-Dichloroethane |
33. | Trichloroethene |
34. | 1,4-Difluorobenzene |
35. | tert-Amyl ethyl ether (TAEE) |
36. | Dibromomethane |
37. | 1,2-Dichloropropane |
38. | Bromodichloromethane |
39. | cis-1,3-Dichloropropene |
40. | Toluene |
41. | Tetrachloroethene |
42. | trans-1,3-Dichloropropene |
43. | 1,1,2-Trichloroethane |
44. | Ethyl methacrylate |
45. | Dibromochloromethane |
46. | 1,3-Dichloropropane |
47. | 1,2-Dibromoethane |
48. | Chlorobenzene-D5 |
49. | Chlorobenzene |
50. | Ethylbenzene |
51. | 1,1,1,2-Tetrachloroethane |
52. | m-Xylene |
53. | p-Xylene |
54. | o-Xylene |
Peaks | |
---|---|
55. | Styrene |
56. | Bromoform |
57. | Isopropylbenzene |
58. | 4-Bromofluorobenzene (SS) |
59. | Bromobenzene |
60. | n-Propylbenzene |
61. | 1,1,2,2-Tetrachloroethane |
62. | 2-Chlorotoluene |
63. | 1,3,5-Trimethylbenzene |
64. | 1,2,3-Trichloropropane |
65. | 4-Chlorotoluene |
66. | tert-Butylbenzene |
67. | Pentachloroethane |
68. | 1,2,4-Trimethylbenzene |
69. | sec-Butylbenzene |
70. | 4-Isopropyltoluene |
71. | 1,3-Dichlorobenzene |
72. | 1,4-Dichlorobenzene-D4 |
73. | 1,4-Dichlorobenzene |
74. | n-Butylbenzene |
75. | Hexachloroethane |
76. | 1,2-Dichlorobenzene-D4 (SS) |
77. | 1,2-Dichlorobenzene |
78. | 1,2-Dibromo-3-chloropropane |
79. | Hexachlorobutadiene |
80. | 1,2,4-Trichlorobenzene |
81. | Naphthalene |
82. | 1,2,3-Trichlorobenzene |
Column | Rtx-VMS, 30 m, 0.25 mm ID, 1.40 µm (cat.# 19915) |
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Standard/Sample | 524.3 internal standard/surrogate mix (cat.# 30017) |
524.3 gas calibration mix (cat.# 30014) | |
524.3 VOA MegaMix standard (cat.# 30013) | |
Diluent: | RO water |
Conc.: | 5 ng/mL (5 mL sample) |
Injection | purge and trap split (split ratio 30:1) |
Liner: | Premium 1.0mm ID straight inlet liner (cat.# 23333.1) |
Inj. Temp.: | 200 °C |
Purge and Trap | |
Instrument: | EST Encon Evolution |
Trap Type: | Vocarb 3000 |
Purge: | 11 min, flow 40 mL/min |
Dry Purge: | 1 min, flow 50 mL/min |
Desorb: | 1 min @ 260 °C, flow 30.9 mL/min |
Bake: | 8 min @ 265 °C |
Interface Connection: | injection port |
Transfer Line Temp.: | 150 °C |
Oven | |
Oven Temp.: | 45 °C (hold 4.5 min) to 100 °C at 12 °C/min to 240 °C at 25 °C/min (hold 1.32 min) |
Carrier Gas | He, constant flow |
Flow Rate: | 0.9 mL/min |
Detector | MS | ||||||||||||
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Mode: | Scan | ||||||||||||
Scan Program: | |||||||||||||
|
|||||||||||||
Transfer Line Temp.: | 240 °C | ||||||||||||
Analyzer Type: | Quadrupole | ||||||||||||
Source Temp.: | 230 °C | ||||||||||||
Quad Temp.: | 150 °C | ||||||||||||
Electron Energy: | 70 eV | ||||||||||||
Solvent Delay Time: | 1.5 min | ||||||||||||
Tune Type: | BFB | ||||||||||||
Ionization Mode: | EI | ||||||||||||
Instrument | Agilent 7890A GC & 5975C MSD | ||||||||||||
Acknowledgement | EST Analytical provided the Centurion robotic autosampler and Encon Evolution P&T concentrator. |
Peaks | |
---|---|
1. | Dichlorodifluoromethane |
2. | Chloromethane |
3. | Vinyl chloride |
4. | Bromomethane |
5. | Chloroethane |
6. | Trichlorofluoromethane |
7. | Diethyl ether |
8. | 1,1-Dichloroethene |
9. | Carbon disulfide |
10. | 1,1,2-Trichloro-1,2,2-trifluoroethane |
11. | Iodomethane |
12. | Allyl chloride |
13. | Methylene chloride |
14. | Acetone |
15. | trans-1,2-Dichloroethene |
16. | Methyl-D3-tert-butyl-ether |
17. | Methyl acetate |
18. | Methyl tert-butyl ether |
19. | tert-Butyl alcohol |
20. | Acetonitrile |
21. | Diisopropyl ether |
22. | Chloroprene |
23. | 1,1-Dichloroethane |
24. | Acrylonitrile |
25. | Ethyl tert-butyl ether |
26. | cis-1,2-Dichloroethene |
27. | 2,2-Dichloropropane |
28. | Bromochloromethane |
29. | Chloroform |
30. | Carbon tetrachloride |
31. | Tetrahydrofuran |
32. | Methyl acrylate |
33. | 1,1,1-Trichloroethane |
34. | Dibromofluoromethane |
Peaks | |
---|---|
35. | 1,1-Dichloropropene |
36. | 2-Butanone |
37. | Benzene |
38. | Propionitrile |
39. | Methacrylonitrile |
40. | 1,2-Dichloroethane-D4 |
41. | Pentafluorobenzene |
42. | tert-Amyl methyl ether |
43. | 1,2-Dichloroethane |
44. | Isobutyl alcohol |
45. | Trichloroethene |
46. | 1,4-Difluorobenzene |
47. | Dibromomethane |
48. | 1,2-Dichloropropane |
49. | Bromodichloromethane |
50. | Methyl methacrylate |
51. | cis-1,3-Dichloropropene |
52. | 2-Chloroethyl vinyl ether |
53. | Toluene-d8 |
54. | Toluene |
55. | 2-Nitropropane |
56. | Tetrachloroethene |
57. | 2-Bromo-1-chloropropane |
58. | 4-Methyl-2-pentanone |
59. | trans-1,3-Dichloropropene |
60. | 1,1,2-Trichloroethane |
61. | Ethyl methacrylate |
62. | Dibromochloromethane |
63. | 1,3-Dichloropropane |
64. | 1,2-Dibromoethane |
65. | 2-Hexanone |
66. | Chlorobenzene-D5 |
67. | Chlorobenzene |
68. | Ethylbenzene |
Peaks | |
---|---|
69. | 1,1,1,2-Tetrachloroethane |
70. | m-Xylene |
71. | p-Xylene |
72. | o-Xylene |
73. | Bromoform |
74. | Styrene |
75. | Isopropylbenzene |
76. | 4-Bromo-1-fluorobenzene |
77. | Bromobenzene |
78. | cis-1,4-Dichloro-2-butene |
79. | 1,4-Dichlorobutane |
80. | n-Propylbenzene |
81. | 1,1,2,2-Tetrachloroethane |
82. | 2-Chlorotoluene |
83. | 1,2,3-Trichloropropane |
84. | 1,3,5-Trimethylbenzene |
85. | trans-1,4-Dichloro-2-butene |
86. | 4-Chlorotoluene |
87. | tert-Butylbenzene |
88. | Pentachloroethane |
89. | 1,2,4-Trimethylbenzene |
90. | sec-Butylbenzene |
91. | p-Isopropyltoluene |
92. | 1,3-Dichlorobenzene |
93. | 1,4-Dichlorobenzene-D4 |
94. | 1,4-Dichlorobenzene |
95. | n-Butylbenzene |
96. | 1,2-Dichlorobenzene |
97. | 1,2-Dibromo-3-chloropropane |
98. | Nitrobenzene |
99. | Hexachlorobutadiene |
100. | 1,2,4-Trichlorobenzene |
101. | Naphthalene |
102. | 1,2,3-Trichlorobenzene |
Column | Rtx-VMS, 30 m, 0.25 mm ID, 1.4 µm (cat.# 19915) |
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Standard/Sample | 8260B MegaMix calibration mix kit (cat.# 30475) |
California oxygenates mix (cat.# 30465) | |
VOA calibration mix #1 (ketones) (cat.# 30006) | |
8260A surrogate mix (cat.# 30240) | |
8260 internal standard mix (cat.# 30074) | |
Injection | purge and trap split (split ratio 25:1) |
Inj. Temp.: | 250 °C |
Purge and Trap | |
Instrument: | O.I. Analytical 4560 with 4551A Autosampler |
Trap Type: | #10 (Tenax/silica gel/carbon molecular sieve) |
Purge: | 11 min @ 20 °C, flow 38 mL/min |
Desorb Preheat Temp.: | 150 °C |
Desorb: | 1.0 min @ 190 °C, flow 32 mL/min |
Bake: | 10 min @ 210 °C |
Transfer Line Temp.: | 110 °C |
Oven | |
Oven Temp.: | 35 °C (hold 7 min) to 90 °C at 4 °C/min to 220 °C at 45 °C/min (hold 1 min) |
Carrier Gas | He, constant flow |
Flow Rate: | 1.3 mL/min |
Dead Time: | 1.47 min @ 35 °C |
Detector | Agilent 5971A GC-MS |
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Transfer Line Temp.: | 280 °C |
Tune Type: | PFTBA/BFB |
Scan Range: | 35-260 amu |
Notes | Sample Size: 10 mL Sample Temp: 40 °C Water Management: 110 °C purge, 0 °C desorb, 240 °C bake 6-Port Valve: 110 °C Sparge Mount: 45 °C Valve Manifold: 50 °C Other Conditions: prepurge, preheat, dry purge OFF |
Acknowledgement | Purge & trap courtesy of O.I. Analytical |