Identifiez les composés semi-volatils grâce à la fiabilité et à la robustesse de nos colonnes Rxi-SVOCms
- Exceptionnelle inertie garantissant des étalonnages réussis et une productivité maximale.
- Excellente résolution des paires critiques pour plus de précision.
- Performances constantes d’une colonne à l’autre.
- Grande longévité.
Notre colonne GC Rxi-SVOCms a été désignée meilleur nouveau produit de l'année ("Best New Analytical Science Product") dans le cadre des SelectScience Scientists' Choice Awards. |
Spécialement conçues pour les analyses de composés semi-volatils, les nouvelles colonnes Restek Rxi-SVOCms garantissent des performances constantes qui préservent l’étalonnage de la colonne afin de prolonger les temps d’analyse au maximum avant de devoir réétalonner l’instrument ou remplacer la colonne. Grâce à leur nouveau polymère et à leur nouvelle désactivation, ces colonnes très inertes à la sélectivité étroitement contrôlée offrent des performances exceptionnelles pour une grande variété d’analytes (acides, basiques et neutres).
Les colonnes Rxi-SVOCms sont spécifiquement ajustées pour améliorer la forme des pics de certains COSV difficiles, comme le pentachlorophénol, la pyridine et la benzidine, et pour garantir une résolution optimale des hydrocarbures aromatiques polycycliques (HAP) difficiles à séparer. La Figure 1 montre que les analytes réactifs les plus problématiques présentent des pics gaussiens. En outre, une excellente résolution (R ≥ 85 %) est obtenue pour le benzo(b)fluoranthène et le benzo(k)fluoranthène, deux HAP isobares qui doivent être séparés par la chromatographie, ainsi que pour l’indeno(1,2,3-c,d)pyrène et le dibenz[a,h]anthracène.
Pour les chimistes du secteur environnemental qui sont limités par les performances variables des colonnes, les échecs d’étalonnage fréquents et les durées de vie courtes, le passage aux robustes colonnes Rxi-SVOCms peut garantir que les exigences relatives aux données sont respectées plus longtemps, et que les temps d’arrêt sont réduits au minimum.
Figure 1 : Les colonnes Rxi-SVOCms offrent des performances chromatographiques exceptionnelles. Elles produisent à chaque fois des pics fins et une bonne résolution, même pour les composés problématiques. L’injection "split" est recommandée, si possible, car elle réduit la contamination dans l’injecteur et lors du transfert de l’échantillon vers la colonne analytique.
Peaks | tR (min) | |
---|---|---|
1. | (IS) 1,4-Dioxane-d8 | 1.87 |
2. | N-Nitrosodimethylamine | 2.00 |
3. | Pyridine | 2.03 |
4. | (SS) 2-Fluorophenol | 2.67 |
5. | (SS) Phenol-d6 | 3.29 |
6. | Phenol | 3.30 |
7. | Aniline | 3.36 |
8. | Bis(2-chloroethyl) ether | 3.40 |
9. | 2-Chlorophenol | 3.46 |
10. | 1,3-Dichlorobenzene | 3.59 |
11. | (IS) 1,4-Dichlorobenzene-D4 | 3.63 |
12. | 1,4-Dichlorobenzene | 3.65 |
13. | Benzyl alcohol | 3.72 |
14. | 1,2-Dichlorobenzene | 3.78 |
15. | 2-Methylphenol | 3.80 |
16. | Bis(2-Chloroisopropyl)ether | 3.84 |
17. | 4-Methylphenol | 3.93 |
18. | 3-Methylphenol | 3.93 |
19. | N-Nitrosodi-N-propylamine | 3.95 |
20. | Hexachloroethane | 4.07 |
21. | (SS) Nitrobenzene-D5 | 4.10 |
22. | Nitrobenzene | 4.11 |
23. | Isophorone | 4.32 |
24. | 2-Nitrophenol | 4.40 |
25. | 2,4-Dimethylphenol | 4.42 |
26. | Benzoic acid | 4.46 |
27. | Bis(2-chloroethoxy)methane | 4.51 |
28. | 2,4-Dichlorophenol | 4.61 |
29. | 1,2,4-Trichlorobenzene | 4.70 |
30. | (IS) Naphthalene-D8 | 4.76 |
31. | Naphthalene | 4.78 |
Peaks | tR (min) | |
---|---|---|
32. | 4-Chloroaniline | 4.82 |
33. | Hexachlorobutadiene | 4.89 |
34. | 4-Chloro-3-methylphenol | 5.26 |
35. | 2-Methylnaphthalene | 5.43 |
36. | 1-Methylnaphthalene | 5.53 |
37. | Hexachlorocyclopentadiene | 5.59 |
38. | 2,4,6-Trichlorophenol | 5.70 |
39. | 2,4,5-Trichlorophenol | 5.73 |
40. | (SS) 2-Fluorobiphenyl | 5.79 |
41. | 2-Chloronaphthalene | 5.91 |
42. | 2-Nitroaniline | 6.00 |
43. | 1,4-Dinitrobenzene | 6.13 |
44. | Dimethyl phthalate | 6.18 |
45. | 1,3-Dinitrobenzene | 6.20 |
46. | 2,6-Dinitrotoluene | 6.24 |
47. | 1,2-Dinitrobenzene | 6.29 |
48. | Acenaphthylene | 6.31 |
49. | 3-Nitroaniline | 6.40 |
50. | (IS) Acenaphthene-D10 | 6.45 |
51. | Acenaphthene | 6.48 |
52. | 2,4-Dinitrophenol | 6.50 |
53. | 4-Nitrophenol | 6.55 |
54. | 2,4-Dinitrotoluene | 6.63 |
55. | Dibenzofuran | 6.65 |
56. | 2,3,5,6-Tetrachlorophenol | 6.73 |
57. | 2,3,4,6-Tetrachlorophenol | 6.77 |
58. | Diethyl phthalate | 6.88 |
59. | 4-Chlorophenyl phenyl ether | 6.99 |
60. | Fluorene | 6.99 |
61. | 4-Nitroaniline | 7.00 |
62. | 4,6-Dinitro-2-methylphenol | 7.03 |
Peaks | tR (min) | |
---|---|---|
63. | N-Nitrosodiphenylamine | 7.10 |
64. | N,N-Diphenylhydrazine | 7.15 |
65. | (SS) 2,4,6-Tribromophenol | 7.23 |
66. | 4-Bromophenyl phenyl ether | 7.47 |
67. | Hexachlorobenzene | 7.53 |
68. | Pentachlorophenol | 7.72 |
69. | (IS) Phenanthrene-D10 | 7.92 |
70. | Phenanthrene | 7.94 |
71. | Anthracene | 7.99 |
72. | Carbazole | 8.15 |
73. | di-n-Butyl phthalate | 8.49 |
74. | Fluoranthene | 9.12 |
75. | Benzidine | 9.24 |
76. | (SS) Pyrene-D10 | 9.32 |
77. | Pyrene | 9.34 |
78. | (SS) p-Terphenyl-d14 | 9.49 |
79. | 3,3'-Dimethylbenzidine | 9.98 |
80. | Butyl benzyl phthalate | 10.00 |
81. | Bis(2-ethylhexyl) adipate | 10.09 |
82. | 3,3'-Dichlorobenzidine | 10.62 |
83. | Benz[a]anthracene | 10.66 |
84. | (IS) Chrysene-D12 | 10.67 |
85. | Chrysene | 10.71 |
86. | Bis(2-ethylhexyl) phthalate | 10.71 |
87. | Di-n-octyl phthalate | 11.68 |
88. | Benzo[b]fluoranthene | 12.30 |
89. | Benzo[k]fluoranthene | 12.34 |
90. | Benzo[a]pyrene | 12.89 |
91. | (IS) Perylene-D12 | 13.00 |
92. | Indeno[1,2,3-cd]pyrene | 15.32 |
93. | Dibenz[a,h]anthracene | 15.40 |
94. | Benzo[ghi]perylene | 15.95 |
Column | Rxi-SVOCms, 30 m, 0.25 mm ID, 0.25 µm (cat.# 16623) |
---|---|
Standard/Sample | 8270 MegaMix standard (cat.# 31850) |
8270 Benzidines mix (cat.# 31852) | |
Benzoic acid (cat.# 31879) | |
Revised SV internal standard mix (cat.# 31886) | |
Revised B/N surrogate mix (cat.# 31888) | |
Acid surrogate mix (cat.# 31063) | |
Diluent: | Dichloromethane |
Conc.: | 20 µg/mL |
Injection | |
Inj. Vol.: | 1 µL split (split ratio 10:1) |
Liner: | Topaz 4.0 mm ID single taper inlet liner with wool (cat.# 23303) |
Inj. Temp.: | 250 °C |
Split Vent Flow Rate: | 12 mL/min |
Oven | |
Oven Temp.: | 60 °C (hold 0.5 min) to 285 °C at 25 °C/min to 305 °C at 3 °C/min to 330 °C at 20 °C/min (hold 5 min) |
Carrier Gas | He, constant flow |
Flow Rate: | 1.2 mL/min |
Detector | MS | ||||||||
---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|
Mode: | Scan | ||||||||
Scan Program: | |||||||||
| |||||||||
Transfer Line Temp.: | 280 °C | ||||||||
Analyzer Type: | Quadrupole | ||||||||
Source Type: | Inert | ||||||||
Drawout Plate: | 6 mm ID | ||||||||
Source Temp.: | 330 °C | ||||||||
Quad Temp.: | 180 °C | ||||||||
Electron Energy: | 70 eV | ||||||||
Tune Type: | DFTPP | ||||||||
Ionization Mode: | EI | ||||||||
Instrument | Agilent 7890A GC & 5975C MSD | ||||||||
Sample Preparation | Samples were aliquoted into amber 2 mL, 9 mm short-cap, screw-thread vials (cat.# 21143) containing glass Big Mouth inserts (cat.# 21782) and sealed with 2.0 mL, 9 mm short-cap, screw-vial closures (cat.# 23842). |
Des étalonnages stables pour plus de productivité
Les échecs d’étalonnage impliquent une perte de productivité, puisque l’analyse d’échantillons doit être suspendue pendant les longues opérations de maintenance et d’étalonnage. La meilleure inertie des colonnes Rxi-SVOCms contourne ce problème et permet de limiter l’écart-type relatif (%RSD) du facteur de réponse moyen à seulement 6 % par rapport à l’étalonnage initial de six colonnes, pour tous les composés et toutes les colonnes (Tableau I). Ces écarts-types relatifs extrêmement faibles et réguliers des facteurs de réponse garantissent une longévité de l’étalonnage et permet d’analyser davantage d'échantillons avant de devoir réétalonner. La Figure 2 montre des pics et des temps de rétention réguliers même à différentes concentrations de pyridine et de pentachlorophénol, connus comme étant des composés problématiques car ils ont tendance à produire des traînées de pics et ne respectent souvent pas les critères d’étalonnage sur les colonnes peu inertes.
Tableau I : Des performances stables entraînent des étalonnages moins fréquents et laissent plus de temps pour analyser les échantillons, ce qui améliore la productivité du laboratoire. Le vert indique que les étalonnages initiaux sont réussis (n = 6 colonnes).
Composé |
Plage d'étalonnage (µg/ml) |
Écart-type relatif |
N-Nitrosodimethylamine |
1 - 120 |
4.70% |
Pyridine |
1 - 120 |
6.10% |
(SS) 2-Fluorophenol |
1 - 120 |
1.70% |
(SS) Phenol-d6 |
1 - 120 |
2.10% |
Phenol |
1 - 120 |
3.20% |
Aniline |
1 - 120 |
3.10% |
Bis(2-chloroethyl)ether |
1 - 120 |
2.40% |
2-chlorophenol |
1 - 120 |
2.80% |
1,3-dichlorobenzene |
1 - 120 |
2.60% |
1,4-Dichlorobenzene |
1 - 120 |
2.10% |
Benzyl alcohol |
1 - 120 |
3.30% |
1,2-Dichlorobenzene |
1 - 120 |
2.70% |
2-Methylphenol |
1 - 120 |
3.30% |
Bis(2-chloroisopropyl)ether |
1 - 120 |
2.40% |
4-Methylphenol/3-methylphenol |
1 - 120 |
3.30% |
N-nitroso-di-n-propylamine |
1 - 120 |
3.80% |
Hexachloroethane |
1 - 120 |
3.00% |
(SS) Nitrobenzene-D5 |
1 - 120 |
1.60% |
Nitrobenzene |
1 - 120 |
2.60% |
Isophorone |
1 - 120 |
3.40% |
2-Nitrophenol |
1 - 120 |
7.00% |
2,4-Dimethylphenol |
1 - 120 |
3.70% |
Benzoic acid |
2.5 - 120 |
25.00% |
Bis(2-chloroethoxy)methane |
1 - 120 |
3.60% |
2,4-Dichlorophenol |
1 - 120 |
4.10% |
1,2,4-Trichlorobenzene |
1 - 120 |
2.80% |
Naphthalene |
1 - 120 |
3.20% |
4-Chloroaniline |
1 - 120 |
3.90% |
Hexachlorobutadiene |
1 - 120 |
3.70% |
4-Chloro-3-methylphenol |
1 - 120 |
4.40% |
2-Methylnaphthalene |
1 - 120 |
3.40% |
1-Methylnaphthalene |
1 - 120 |
3.60% |
Hexachlorocyclopentadiene |
1 - 120 |
6.90% |
2,4,6-Trichlorophenol |
1 - 120 |
5.90% |
2,4,5-Trichlorophenol |
1 - 120 |
6.20% |
(SS) 2-Fluorobiphenyl |
1 - 120 |
1.10% |
2-Chloronaphthalene |
1 - 120 |
2.80% |
2-Nitroaniline |
1 - 120 |
7.80% |
1,4-Dinitrobenzene |
1 - 120 |
11.10% |
Dimethyl phthalate |
1 - 120 |
3.40% |
1,3-Dinitrobenzene |
1 - 120 |
10.80% |
2,6-Dinitrotoluene |
1 - 120 |
7.80% |
Acenaphthylene |
1 - 120 |
4.10% |
1,2-Dinitrobenzene |
1 - 120 |
8.10% |
3-Nitroaniline |
1 - 120 |
5.80% |
Acenaphthene |
1 - 120 |
3.30% |
2,4-Dinitrophenol |
2.5 - 120 |
17.30% |
4-Nitrophenol |
1 - 120 |
7.90% |
Dibenzofuran |
1 - 120 |
3.50% |
2,4-Dinitrotoluene |
1 - 120 |
11.60% |
2,3,5,6-Tetrachlorophenol |
1 - 120 |
10.40% |
2,3,4,6-Tetrachlorophenol |
1 - 120 |
7.30% |
Diethyl phthalate |
1 - 120 |
4.50% |
4-Chlorophenyl phenyl ether |
1 - 120 |
3.60% |
Fluorene |
1 - 120 |
4.40% |
4-Nitroaniline |
1 - 120 |
9.10% |
4,6-Dinitro-2-methylphenol |
2.5 - 120 |
15.10% |
N-nitrosodiphenylamine |
1 - 120 |
4.60% |
Diphenylhydrazine |
1 - 120 |
4.60% |
(SS) 2,4,6-Tribromophenol |
1 - 120 |
5.50% |
4-Bromophenyl phenyl ether |
1 - 120 |
5.50% |
Hexachlorobenzene |
1 - 120 |
4.30% |
Pentachlorophenol |
1 - 120 |
10.60% |
Phenanthrene |
1 - 120 |
3.70% |
Anthracene |
1 - 120 |
4.80% |
Carbazole |
1 - 120 |
5.30% |
di-n-Butyl phthalate |
1 - 120 |
7.90% |
Fluoranthene |
1 - 120 |
5.10% |
Benzidine |
1 - 120 |
9.30% |
(SS) Pyrene-D10 |
1 - 120 |
1.50% |
Pyrene |
1 - 120 |
4.30% |
(SS) p-Terphenyl-d14 |
1 - 120 |
1.80% |
3,3'-Dimethylbenzidine |
1 - 120 |
9.50% |
Butyl benzyl phthalate |
1 - 120 |
8.60% |
Bis(2-ethylhexyl)adipate |
1 - 120 |
10.50% |
3,3'-Dichlorobenzidine |
1 - 120 |
8.50% |
Benz[a]anthracene |
1 - 120 |
3.20% |
Chrysene |
1 - 120 |
3.70% |
Bis(2-ethylhexyl)phthalate |
1 - 120 |
10.40% |
Di-n-octyl phthalate |
1 - 120 |
13.20% |
Benzo[b]fluoranthene |
1 - 120 |
5.60% |
Benzo[k]fluoranthene |
1 - 120 |
4.90% |
Benzo[a]pyrene |
1 - 120 |
6.30% |
Indeno[123-cd]pyrene |
1 - 120 |
7.20% |
Dibenz[a,h]anthracene |
1 - 120 |
7.50% |
Benzo[ghi]perylene |
1 - 120 |
6.40% |
Average %RSD: |
6.00% |
Figure 2 : Très inertes, les colonnes Rxi-SVOCms produisent des pics d’une grande finesse et des temps de rétention réguliers, même pour les faibles quantités de composés réactifs qui ont tendance à échouer, comme la pyridine (amine basique) et le pentachlorophénol (phénol acide).
Des performances restaurées facilement avec les colonnes robustes et longue durée Rxi-SVOCms
L’accumulation de composés provenant d’échantillons environnementaux très complexes est un défi du quotidien, mais cela ne détériore pas nécessairement les colonnes. La phase améliorée garantit la durabilité des performances des colonnes Rxi-SVOCms, même en conditions très agressives. La Figure 3 montre les performances d’étalonnage pour des colonnes soumises à des injections répétées d’un échantillon complexe et dont les parties contaminées étaient coupées après 30 injections. Même après 300 injections, les performances étaient restaurées facilement au moyen d’un rapide raccourcissement de colonne, comme en témoignent les moins de 10 % de composés concernés par un échec de la vérification de l'étalonnage après la coupe. En restaurant les performances grâce à une simple opération de maintenance de routine, le nombre d'échantillons analysés augmente car les temps d’arrêt et les remplacements de colonnes sont moins fréquents.
Des performances constantes et précises intégrées dans chaque colonne
Du polymère exclusif au contrôle qualité du produit final, chaque aspect de la fabrication des colonnes Rxi-SVOCms est étroitement contrôlé et fait l’objet d’essais répétitifs exigeants. Il en résulte des performances extrêmement constantes d’une colonne à l’autre, pour obtenir des analyses chromatographiques identiques de chaque colonne installée. Les colonnes Rxi-SVOCms se caractérisent par des temps de rétention stables, même pour le 2,4-dinitrophénol, un composé actif souvent problématique, et par des profils de "bleeding" extrêmement faible (Figure 4).
Figure 4 : Chaque colonne Rxi-SVOCms fournit des temps de rétention réguliers et un faible "bleeding" pour des résultats chromatographiques fiables avec chaque colonne.
Peaks | |
---|---|
1. | 4-Picoline |
2. | 2-Ethylhexanoic acid |
3. | 1,6-Hexanediol |
4. | 4-Chlorophenol |
5. | n-Tridecane |
6. | 1-Methylnaphthalene |
Peaks | |
---|---|
7. | 1-Undecanol |
8. | n-Tetradecane |
9. | Dicyclohexylamine |
10. | Acenaphthene-d10 |
11. | 2,4-Dinitrophenol |
12. | Pentachlorophenol |
13. | Benzidine |
Column | Rxi-SVOCms, 30 m, 0.25 mm ID, 0.25 µm (cat.# 16623) |
---|---|
Standard/Sample | Low-level activity test mix |
Diluent: | Dichloromethane |
Conc.: | 200 µg/mL |
Injection | |
Inj. Vol.: | 1 µL split (split ratio 200:1) |
Liner: | Topaz 4.0 mm ID Precision inlet liner with wool (cat.# 23305) |
Inj. Temp.: | 250 °C |
Split Vent Flow Rate: | 236 mL/min |
Oven | |
Oven Temp.: | 125 °C (hold 12.5 min) to 340 °C at 20 °C/min (hold 4 min) |
Carrier Gas | He, constant flow |
Linear Velocity: | 32 cm/sec @ 125 °C |
Dead Time: | 1.5885 min @ 125 °C |
Detector | FID @ 350 °C |
---|---|
Make-up Gas Flow Rate: | 40 mL/min |
Make-up Gas Type: | N2 |
Hydrogen flow: | 40 mL/min |
Air flow: | 400 mL/min |
Data Rate: | 50 Hz |
Instrument | Agilent 7890B GC |
Sample Preparation | Samples were aliquoted into amber 2 mL, 9 mm short-cap, screw-thread vials (cat.# 21143) containing glass Big Mouth inserts (cat.# 21782) and sealed with 2.0 mL, 9 mm short-cap, screw-vial closures (cat.# 23842). |
Résolution fiable des HAP dans l’environnement
Les hydrocarbures aromatiques polycycliques (HAP) font partie des composés les plus difficiles à séparer avec les méthodes de détection des composés semi-volatils. L’obtention de résultats précis pour les analyses de traces nécessite une colonne très sélective et efficace, capable de séparer des composés avec des temps de rétention proches. La Figure 5 montre que la colonne Rxi-SVOCms offre une résolution optimisée pour 23 polluants prioritaires, notamment le benzo(b)fluoranthène et le benzo(k)fluoranthène, qui doivent être séparés par la chromatographie pour pouvoir les quantifier individuellement.
Figure 5 : Les colonnes Rxi-SVOCms fournissent une séparation optimisée pour des HAP dont les temps de rétention sont très proches, notamment des isobares qui ne peuvent pas être identifiés seulement par la MS.
Peaks | tR (min) | |
---|---|---|
1. | Naphthalene | 6.27 |
2. | 2-Methylnaphthalene | 7.09 |
3. | 1-Methylnaphthalene | 7.20 |
4. | Biphenyl | 7.65 |
5. | 2,6-Dimethylnaphthalene | 7.84 |
6. | Acenaphthylene | 8.17 |
7. | Acenaphthene | 8.38 |
8. | 2,3,5-Trimethylnaphthalene | 8.85 |
9. | Fluorene | 9.01 |
10. | Dibenzothiophene | 10.02 |
11. | Phenanthrene | 10.18 |
Peaks | tR (min) | |
---|---|---|
12. | Anthracene | 10.24 |
13. | 1-Methylphenanthrene | 10.94 |
14. | Fluoranthene | 11.64 |
15. | Pyrene | 11.91 |
16. | Benz[a]anthracene | 13.45 |
17. | Chrysene | 13.50 |
18. | Benzo[b]fluoranthene | 15.13 |
19. | Benzo[k]fluoranthene | 15.18 |
20. | Benzo[a]pyrene | 15.69 |
21. | Indeno[1,2,3-cd]pyrene | 17.77 |
22. | Dibenz[a,h]anthracene | 17.82 |
23. | Benzo[ghi]perylene | 18.26 |
Column | Rxi-SVOCms, 30 m, 0.25 mm ID, 0.25 µm (cat.# 16623) |
---|---|
Standard/Sample | Custom PAH SIM standard |
Diluent: | Dichloromethane |
Conc.: | 40 µg/mL |
Injection | |
Inj. Vol.: | 1 µL split (split ratio 20:1) |
Liner: | Topaz 4.0 mm ID single taper inlet liner with wool (cat.# 23303) |
Inj. Temp.: | 250 °C |
Split Vent Flow Rate: | 24 mL/min |
Oven | |
Oven Temp.: | 40 °C (hold 0.5 min) to 280 °C at 20 °C/min to 330 °C at 6 °C/min (hold 4 min) |
Carrier Gas | He, constant flow |
Flow Rate: | 1.2 mL/min |
Detector | MS | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|
Mode: | SIM | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
SIM Program: | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
Transfer Line Temp.: | 280 °C | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
Analyzer Type: | Quadrupole | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
Source Type: | Extractor | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
Extractor Lens: | 6 mm ID | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
Source Temp.: | 330 °C | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
Quad Temp.: | 150 °C | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
Tune Type: | DFTPP | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
Ionization Mode: | EI | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
Instrument | Agilent 7890B GC & 5977A MSD | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
Sample Preparation | 200 ppm standard diluted 5x, then analyzed at 20:1 split. Samples were aliquoted into amber 2 mL, 9 mm short-cap, screw-thread vials (cat.# 21143) containing glass Big Mouth inserts (cat.# 21782) and sealed with 2.0 mL, 9 mm short-cap, screw-vial closures (cat.# 23842). |